La Plataforma de Microscopía se encarga de la gestión del uso, mantenimiento y puesta a punto de los microscopios.
Asimismo ofrece asistencia en la preparación de muestras, el manejo del equipamiento, análisis de datos y diseño experimental.

Servicios ofrecidos

A continuación, se indican los servicios ofrecidos por la plataforma. Estos servicios pueden adaptarse y también se pueden solicitar otros no incluidos. Para más información contactar con la plataforma.

  • Microscopía con técnicas de luz transmitida:
    • Adquisición de imágenes con filtros para: campo claro, contraste de fases y contraste diferencial interferencial (DIC).
  • Microscopía de fluorescencia:
    • Adquisición de imágenes de marcadores fluorescentes tales como: DAPI, GFP, YPF, Texas Red y rojo lejano.
    • Diseño y realización de experimentos multidimensionales.
  • Microscopía confocal:
    • Realización de microscopía de fluorescencia de alta resolución mediante microscopía confocal en todo el espectro visible (? excit: 405, 458, 488, 514, 561 y 633 nm).
    • Adquisición de imágenes en super-resolución mediante el módulo Airyscan (? excit: 405, 458, 488, 514, 561 y 633 nm).
  • Live-cell imaging:
    • Cabina de incubación con control de temperatura, CO2 y humedad para experimentos de fluorescencia. de cultivos celulares para experimentos "time-lapse" con microscopía convencional de luz transmitida y fluorescencia simultáneas.
    • Par de cámaras CCD de alta sensibilidad (Zeiss Axiocam 503 mono y AxioCam MRc).
    • Experimentos de time-lapse de corta y larga duración (ej, varios días) con cultivos celulares y microscopía de luz transmitida y fluorescencia simultáneas.
  • Microscopía para análisis de alto rendimiento:
    • Adquisición de imagen aleatoria en soportes de cultivo predefinidos.
    • Pletina motorizada para el registro simultáneo de multiples posiciones en un experimento de time-lapse.
  • Procesado, análisis y cuantificación de imagen:
    • Medición de número, tamaño e intensidad e objetos, etc.
    • Reconstrucciones, mediciones y renderizados tridimensionales.

Ejemplos de investigaciones realizadas en la plataforma

Estos son ejemplos de la experimentación realizada por los investigadores en la plataforma.

Experimento de time-lapse mostrando la capacidad de proliferación de celulas de tendón en cultivo.

Cedido por la Dra. Isabel Andía Ortiz

Localización subcelular de una variante de la proteína supresora tumoral PTEN en células COS-7.

Sección óptica confocal y tomografía de la acumulación anómala del precursor de Lamin A en el núcleo de células madre mesenquimales.

Cedido por la Dra. Clara I. Rodriguez

Experimento de time-lapse que muestra la capacidad de colonización de células madre mesenquimales humanas en un ensayo de cicatrización de heridas.

Cedido por la Dra. Clara I. Rodriguez

Solicitud de servicios

Para acceder a los servicios ofrecidos por esta Plataforma, es necesario realizar una Solicitud de servicio, rellenando el documento Word Solicitud de uso de la Plataforma de Microscopía y enviándolo al coordinador de la plataforma javier.diezgarcia2@osakidetza.eus:

Solicitud de uso de la Plataforma de Microscopía.docx (DOCX)
Instrucciones para la Solicitud de Servicios de la Plataforma de Microscopía (Actualizadas Mayo. 2017)
 
Javier Díez García
Técnico
(0034) 94 600 6000 - Ext 2124
Formulario de contacto - Microscopia
Este campo es obligatorio.
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Infraestructura

La Plataforma dispone de dos microscopios invertidos equipados con módulo de fluorescencia.

Dos microscopios cuentan con una cámara de incubación con control del porcentaje de CO2, humedad y temperatura para proporcionar las condiciones ambientales necesarias para la realización de experimentos in vivo "time-lapse" multidimensionales con cultivos celulares.

La plataforma ofrece la posibilidad de adquisición de imágenes de alta resolución mediante sistemas de iluminación estructurada con el módulo Zeiss ApoTome.2 y de alcanzar valores de super-resolución gracias a su módulo Zeiss Airyscan.

  • Microscopio invertido Axio Observer.Z1
  • Objetivos Plan-Apocromat 5x, 10x, 20x, 40x Oil, 63x Oil, 63x Water y 100x Oil.
  • Control de posición con pletina motorizada para desplazamiento horizontal e inserto piezoeléctrico para desplazamiento vertical.
  • Lámpara y filtros de fluorescencia zero-pixel-shift para DAPI, GFP, Cy3 y Cy5.
  • Cámara AxioCam MRm.
  • Módulo de escaneo LSM 880.
  • Líneas de láser: 405, 458, 488, 514, 561 y 633 nm.
  • Detector de luz transmitida T-PMT y filtros ópticos para campo claro, contraste de fases y contraste diferencial de interferencia.
  • Tres PMT para detección de fluorescencia más un detector Airyscan.
  • Microscopio invertido Axio Observer.Z1.
  • Objetivos Plan; 5x, 10x, Neofluar 20x y 40x, y Apochromat 20x y 63x Oil.
  • Control de posición con pletina motorizada para desplazamiento horizontal y piezoeléctrico para desplazamiento vertical.
  • Filtros ópticos para campo claro, contraste de fases y contraste diferencial de interferencia.
  • Lámpara y filtros de fluorescencia zero-pixel-shift para DAPI, GFP, Cy3 y Cy5.
  • Cámaras AxioCam MRc y Axiocam 503 Mono.
  • Módulo de iluminación estructurada ApoTome.2.
  • Cabina de incubación XLmulti S1.
  • Unidad de calefacción de la cabina de incubación XL S1, Módulos S1 para el control de CO2 y temperatura.
  • Microscopio invertido.
  • Objetivos 10x, 20x, 40x, 60x y 100x.
  • Técnicas de luz transmitida (campo claro, contraste de fases y contraste diferencial interferencial) y filtros de fluorescencia (DAPI, GFP, YPF y Texas Red).
  • Platina y revolver de objetivos motorizados (control X,Y,Z).
  • Cámara de incubación Okolab con control de temperatura, humedad y gases.
  • Configuración con doble cámara digital para la adquisición de imágenes con alta resolución y captura rápida.
  • Automatización programable de objetivos, filtros ópticos y de fluorescencia, posicionamiento de la muestra y auto-enfoque para experimentos de "time-lapse".
  • Microscopio invertido.
  • Objetivos 5x, 10x, 20x, 40x y 63x.
  • Técnicas de luz transmitida (campo claro y contraste de fases) y filtros de fluorescencia (DAPI, GFP y Texas Red).
  • Procesador de 8 núcleos Intel® Xeon® E5-2623 v3@3GHz
  • 48 GB de memoria RAM
  • Sistema operativo Windows 7 Professional SP1 64-bits
  • Monitor TFT 30"
  • USB 3.0
  • Software: ZEN Blue y ZEN Black; ImageJ y Fiji